Informacija

Kodėl mes naudojame autoklavą 121°C (250F) temperatūroje? (Kilmė)

Kodėl mes naudojame autoklavą 121°C (250F) temperatūroje? (Kilmė)


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Leiskite man pradėti sakydamas, kad žinau kodėl, bet aš klausiu daugiau apie kilmę.

Mano klausimas labiau susijęs su literatūra, kurios, regis, nerandu. Radau keletą naudingų popierių ir informacijos apie 121 °C temperatūros naudojimą įrangai sterilizuoti ir bakterijoms naikinti, bet vis tiek norėjau užduoti klausimą ir sužinoti, ar kas nors žino apie tai daugiau.

Taigi, norėdamas pakartoti savo klausimą, noriu pamatyti duomenis, kodėl 121 °C, o ne 120 °C?

Iš pradžių maniau, kad taip yra dėl to, kad eksperimentai galėjo būti atlikti F, o tarpusavio konversija iš F į C davė 121 °C, o tai yra nelyginis skaičius.

Kiek galėjau suprasti, tai prasidėjo maisto pramonėje nuo įmonės, kuri gamino konservuotus produktus, o jų konservuoti produktai sprogo. Ši bendrovė kreipėsi į MIT ir atlikusi tam tikrus tyrimus nustatė, kad esant 121 °C (250 F) temperatūrai 60 minučių retorta sunaikins sporas, išlikusias po ankstesnio apdorojimo. (toliau eksp. sumažintas laikas iki 10 min, konservuotiems moliuskams)

Tai išsamiai aprašyta dokumente, kuris buvo paskelbtas 1897 m

https://www.jstor.org/stable/1623441?seq=1#metadata_info_tab_contents

Autoklavas buvo išrastas 1879 m. (18 metų iki publikacijos). Leidinio pabaigoje rašoma:

Išsamūs organizmų ir daugelio kitų eksperimentų aprašymai bus pateikti visame mūsų dokumente šia tema, kuris bus pateiktas būsimame leidinio numeryje. Technologijų ketvirtis

Man nepavyko rasti šios konkrečios problemos Technologijų ketvirtis

Autoriai (S. C. Prescott ir W. Lyman Underwood) taip pat sako:

Kaip parodėme ankstesniame darbe, norint praktiškai užtikrinti sterilizavimą, būtina pasiekti ir palaikyti temperatūrą, viršijančią 121°C (212F) visame skardinės turinyje. Gali būti taikomas pertraukiamas sterilizavimas, tačiau jis yra mažiau efektyvus ir nepraktiškas dideliu ar komerciniu mastu. Eksperimentu nustatėme, kad šešiasdešimt minučių 121 ° C (250 F) temperatūroje yra pakankamas laikas kukurūzams sterilizuoti, ir atrodo, kad tai gali būti šiek tiek sutrumpinta arba sumažinta temperatūra.

Jie naudoja °C, bet kadangi tai yra 1890-ieji, maisto pramonėje naudojamos retortos (autoklavai) gali būti F ir autoriai tikriausiai pavertė retortų įrangos rodmenis į °C mokslo bendruomenei.

Be to, tai buvo terminės mirties tyrimo pradininkas ir, jei pažvelgsite į temperatūrą, kurią jie naudojo tyrimui, jie yra atsitiktiniai. Turbūt todėl, kad norėjo pažiūrėti kokia temperatūra + laikas pasieks skardinės centrą. Kaitinimo arba apdorojimo trukmė ir suteikiamas slėgis įvairiose gamyklose šiek tiek skiriasi ir galėjo būti priežastis, dėl kurios jie pasiekė 121 °C, o ne 120 °C.

Šioje srityje buvo atlikti tolesni tyrimai: 1956 ir 1958 m. F. H. Deindoerfer ir A. E. Humhrey nustatė, kad 250 F (121 C) yra optimali temperatūra, kad būtų išvengta žalos maistinėms terpėms. Jie taip pat aptarė terminio sterilizavimo laiko analizės metodus.

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1057515/

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1057690/

Tai, ko aš specialiai ieškojau, yra pirmasis terminės mirties tyrimas su D&Z reikšmėmis, dėl kurių buvo plačiai naudojama 121 °C. Andy, kodėl reikia laiko ir psi biologiniams mėginiams sterilizuoti. Žinau ir radau dokumentus apie tai, kas naudojama autoklavams patvirtinti.

Geobacillus sterothermophilus (žinomas kaip Bacillus sterothermophilus taip pat) naudojamas autoklavams patvirtinti, nes yra labai atsparus karščiui, todėl yra geras biologinis mikrobų gyvenimo po sterilizacijos rodiklis. Viename mano rastame popieriuje, kuriame buvo keletas grafinių duomenų apie terminį mirtį, naudojama °C, o ne F. Nerandu jokios informacijos apie bakterijų Log sumažėjimą esant 120 °C, lyginant jį su 121 °C. Šis atsakymas taip pat gali būti matematinė lygtis, vedanti į tą temperatūrą, bet tai tik vieta, kurios aš neištyriau

Popierius ant Geobacillus sterothermophilus: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1057891/

Jei kas gali tai rasti Technologijų ketvirtis popierius, apie kurį minėjau pradžioje, tai būtų puiku.


121°C, o ne 120°C priežastis yra dėl to, kaip veikia autoklavai ir kaip jie buvo sukurti. Jie sterilizuojami prisotintais garais esant slėgiui. Istoriškai mes matuojame garų sukuriamą slėgį. Kas veda tiesiai į atsakymą.

Garo energija XIX amžiuje buvo pramonės proceso pagrindas, o norint ją saugiai naudoti, reikėjo stebėti ir kontroliuoti katilo slėgį. Katilo sprogimai nebuvo neįprasti pirmaisiais garo energijos naudojimo laikais. Bourdon slėgio matuoklis buvo išrastas 1849 m. ir buvo tvirta technologija, leidžianti patikimai ir tiksliai išmatuoti garų slėgį.

https://journals.sagepub.com/doi/pdf/10.1177/002029408702000803

Kai Chamberlandas 1879 m. išrado autoklavą iš ankstesnės Papaino greitpuodės, jis rėmėsi tik slėgio matavimu. Tik 1933 m. buvo gaminami autoklavai, kurie stebėjo temperatūrą kanalizacijos linijoje, kad patvirtintų, jog oras buvo išeikvotas ir garai tikrai prisotinti. https://www.steris.com/healthcare/knowledge-center/sterile-processing/everything-about-autoclaves

Garo variklių studijos buvo termodinamikos ir kinetinės dujų molekulinės teorijos vystymosi pagrindas. Nors garai toli gražu nėra idealios dujos, yra nuspėjamas ryšys tarp temperatūros ir slėgio sočiųjų garų, taip pat gerai žinomų šilumos perdavimo savybių. Juos galima rasti ant standartinių inžinerinių garų stalų.

Pavyzdžiai: https://www.engineersedge.com/thermodynamics/steam_tables.htm

Sotieji garai labai efektyviai perduoda šilumą. Štai kodėl nusiplikymo sužalojimai yra tokie sunkūs, palyginti su paprastais nudegimais esant tokiai pačiai temperatūrai. Taip pat prisotinti garai naikina net karščiui atsparius mikroorganizmus autoklave. https://learnaboutgmp.com/good-manufacturing-practices-cgmp/saturated-steam-efficient-sterilization/

Vienos žemės atmosferos slėgis jūros lygyje apibrėžiamas kaip 14,69 svaro kvadratiniame colyje (psi), nors iš tikrųjų jis šiek tiek skiriasi dėl temperatūros ir oro. Dėl šio skirtumo ir dėl to, kad žmonės naudoja arabiškus skaitmenis, aritmetiką ir algebrą, pavyzdžiui, sveikuosius vienetus 5; inžinieriai dažnai mano, kad 1 atmosferos slėgis yra 15 psi. Toks prisotinto garo slėgio kiekis atitinka tipiškų garo katilų pajėgumus. Šis gražus 15 psi prisotintas garas per maždaug 15 minučių sunaikins net labai atsparias bakterijų endosporas. Labai pagrįstas laiko tarpas ir graži mnemonika: 15 psi 15 minučių.

To 15 psi sočiųjų garų temperatūra? 121°C.

Štai kodėl įprastam autoklavui naudojame labai neįprastą 121°C temperatūrą. Taip yra todėl, kad mes iš tikrųjų naudojame apvalią vienos žemės atmosferą garų slėgiui. Ir mes tai padarėme nesirūpindami tiesioginiu temperatūros matavimu pirmuosius 50 autoklavo naudojimo metų. Daugeliu atžvilgių autoklavo temperatūra buvo antrinė.


Audinių allograftų sterilizavimo procedūros

Santrauka:

Užantspauduotų pakuočių, kuriose yra sveikatos priežiūros produktų, biomedžiagų ir audinių transplantatų, sterilizavimas gali būti pasirinktas sterilizavimo būdas, ypač brangių, mažos gamybos apimties gaminių, tokių kaip vaistų prietaisų produktai ir biomedžiagos, pvz., kaulai, oda, sausgyslės ir kitos minkštos medžiagos, naudojamos audinių bankai. Sterilumo patvirtinimas iki sterilumo užtikrinimo lygio 1:10 6 yra pagrįstas statistiniu metodu ir gali papildyti arba pakeisti kitus metodus, pvz., naudojant aseptinę gamybos aplinkos kontrolę. Šiame skyriuje apžvelgiama dabartinė jonizuojančiosios spinduliuotės sterilizavimo protokolų būklė ir jų pritaikymas įvairiems sveikatos priežiūros produktams ir biomedžiagoms.


Kas yra autoklavas (sterilizavimas garais)?

Sterilizacija yra visų formų mikrobų gyvybės sunaikinimas, patvirtintas įrodant labai atsparių bakterijų sporų naikinimą. Tai didžiausias mikrobų naikinimo lygis. Sterilizacija garais arba autoklave yra vienas iš labiausiai paplitusių ir plačiausiai naudojamų sterilizavimo būdų odontologijos praktikoje. Šis procesas reiškia instrumentų sterilizavimo procesą, kurio metu naudojamas laikas, temperatūra ir slėgis, kad sunaikintų visas mikrobų gyvybės formas, įskaitant sporas. Autoklavas yra slėgio kamera, indas, kuriame aukšto slėgio garai naudojami įrangai ir reikmenims sterilizuoti. Manoma, kad tai vienas iš efektyviausių sterilizavimo būdų, sunaikinantis visus mikroorganizmus – tiek patogeninius, tiek nepatogeninius, įskaitant sporas ir virusus. Norint užtikrinti sterilizavimą, autoklave reikia mažiausiai 121 laipsnio Celsijaus (250 laipsnių pagal Farenheitą) ir 15 svarų kvadratiniame colyje (psi) garų slėgį.


MacConkey agaro paruošimas

  1. 50 gramų MacConkey agaro miltelių (žr. gamintojo instrukciją) pasverkite ir suspenduokite 1 litre išgryninto vandens ir gerai išmaišykite.
  2. Kaitinkite dažnai maišydami ir virkite 1 minutę, kad milteliai visiškai ištirptų.121°C temperatūroje 15 minučių.
  3. Atvėsinkite iki 45-50°C, gerai išmaišykite ir supilkite apie 20-25ml į sterilias Petri plokšteles ir leiskite sustingti.
  4. Kai lėkštelės sukietės, pažymėkite spausdinimo medžiagos plokštes su pavadinimu ir paruošimo data (užpakalinėje terpės pusėje, nes dangtelius galima pakeisti)
  5. Laikyti apverstą (dangteliais žemyn) 2-8°C temperatūroje iki naudojimo.

Paruoštą MacConkey agarą taip pat galite įsigyti iš komercinių tiekėjų.


Earle H Spaulding (1968) amerikiečių gydytojas

  • Siūloma, kad tai, kaip objektas bus dezinfekuojamas arba sterilizuojamas, priklausytų nuo objekto paskirties.
  • Spaulding’s klasifikavimo sistema:
    • KRITIŠKAS – objektai, kurie patenka į paprastai sterilų audinį ar kraujagyslių sistemą arba kuriais teka kraujas, turi būti sterilūs.
    • PUSKIRITINIS – objektus, kurie liečia gleivines arba nepažeistą odą, reikia dezinfekuoti (aukšto lygio dezinfekcija [HLD]), kuri sunaikina visus mikroorganizmus, bet daug bakterijų sporų.
    • NEKRITINIS -objektams, liečiantiems tik nepažeistą odą, reikalinga žemo lygio dezinfekcija.

    1989 metais Ozonas sterilizatorius sveikatos priežiūros programoms, kurią sukūrė Life Support,Inc., Erie, Pensilvanija, FDA leido prekiauti.

    Taip pat 1989 m. į JAV rinką patenka Steris System 1*, žemos temperatūros peracto rūgšties sistema, skirta endoskopiniams prietaisams. *2008 metų gegužės mėnesį t jis FDA atmetė „Steris System 1“ ir „Steris“ turėjo jį pašalinti iš rinkos.

    Taip pat 1989 m STATIMAS didelio greičio garo autoklavą į JAV taip pat pristatė SciCan, Inc., Torontas, Ontarijas.

    1993 m. FDA patvirtino Sterrad Sterilizer, plazmos sterilizavimo sistemą, skirtą naudoti JAV.


    Turinys

    Dideli graduoti cilindrai dažniausiai gaminami iš polipropileno dėl puikaus cheminio atsparumo arba polimetilpenteno dėl skaidrumo, todėl yra lengvesni ir mažiau trapūs nei stiklas. Polipropileną (PP) lengva pakartotinai autoklavuoti, tačiau autoklave esant aukštesnei nei 121 °C (250 °F) temperatūrai (priklausomai nuo cheminės sudėties: tipiškas komercinės klasės polipropilenas lydosi aukštesnėje nei 177 °C (351 °F) temperatūroje). deformuoti arba pažeisti polipropileno graduotus cilindrus, kurie turi įtakos tikslumui. [1]

    Tradicinis graduotas cilindras paprastai yra siauras ir aukštas, kad padidėtų tūrio matavimo tikslumas ir tikslumas. Jis turi plastikinį arba stiklinį pagrindą (stovas, kojelė, atrama) ir „snapelį“, kad būtų lengva išpilti išmatuotą skystį. Papildoma versija yra plati ir žema.

    Maišymo cilindrai turi šlifuoto stiklo jungtis, o ne snapelį, todėl juos galima uždaryti kamščiu arba tiesiogiai sujungti su kitais kolektoriaus elementais. [2] Naudojant tokį cilindrą, dozuojamas skystis nepilamas tiesiogiai, bet dažnai pašalinamas naudojant kaniulę. Graduuotas cilindras skirtas nuskaityti skysčio paviršių akių lygyje, kur menisko centras rodo matavimo liniją. Įprasta graduotų cilindrų talpa yra nuo 10 ml iki 1000 ml.

    Skysčio tūriui matuoti dažnai naudojami graduoti cilindrai. Matavimo balionai paprastai yra tikslesni ir tikslesni nei laboratorinės kolbos ir stiklinės, tačiau jie neturėtų būti naudojami atliekant tūrinę analizę [3], turėtų būti naudojami stikliniai matavimo indai, tokie kaip matavimo kolba ar matavimo pipetė, nes tai dar tikslesnė ir tikslesnė. tikslus. Kietosios medžiagos tūriui matuoti netiesiogiai, matuojant skysčio poslinkį, kartais naudojami graduoti cilindrai.

    Siekiant tikslumo, graduotų balionų tūris pavaizduotas skalėse su 3 reikšminiais skaitmenimis: 100 ml balionuose yra 1 ml klasifikavimo skyriai, o 10 ml balionuose - 0,1 ml.

    Yra dvi graduotų cilindrų tikslumo klasės. A klasės tikslumas yra dvigubai didesnis nei B. [4] Cilindrai gali turėti vieną arba dvigubą svarstykles. Vienos svarstyklės leidžia nuskaityti tūrį iš viršaus į apačią (užpildymo tūris), o dvigubos skalės cilindrai leidžia nuskaityti pilant ir pilant (atvirkštinė skalė).

    Grafikuoti balionai kalibruojami arba „sudaryti“ (nurodytas skysčio tūris cilindre) ir pažymėti kaip „TC“ arba „tiekti“ (nurodytas išpilto skysčio tūris, atsižvelgiant į balione likusius skysčio pėdsakus) ir pažymėti „TD“. [5] Anksčiau balionų „tiekti“ ir „sulaikyti“ leistini nuokrypiai buvo skirtingi, tačiau dabar jie yra vienodi. Taip pat labiau tikėtina, kad tarptautiniai simboliai „IN“ ir „EX“ bus naudojami atitinkamai vietoj „TC“ ir „TD“. [6]

    Norint tiksliai nuskaityti tūrį, stebėjimas turi būti akių lygyje ir skaitomas skysčio lygio menisko apačioje. [7] Pagrindinė priežastis, kodėl tūris nuskaitomas per menisku, yra dėl skysčio prigimties uždaroje apsuptoje erdvėje. Iš prigimties skystis cilindre per molekulines jėgas pritrauktų jį supančios sienelės. Tai verčia skysčio paviršių sukurti arba išgaubtą, arba įgaubtą formą, priklausomai nuo skysčio tipo cilindre. Skysčio skaitymas apatinėje arba viršutinėje išgaubto skysčio dalyje prilygsta skysčio nuskaitymui ties menisko. [8] Iš paveikslėlio skysčio lygis bus nuskaitytas menisko apačioje, kuris yra įgaubtas. Tiksliausias rodmuo, kurį čia galima atlikti, yra sumažintas iki 1 ml dėl balione pateiktų matavimo priemonių. Iš to išvestinė paklaida būtų viena dešimtoji mažiausio skaičiaus. Pavyzdžiui, jei nuskaitoma ir apskaičiuota vertė yra 36,5 ml. Taip pat turi būti įtraukta klaida, duokite arba imkite 0,1 ml. Todėl tikslesnė reikšmė prilygsta 36,5 ± 0,1 36,4 arba 36,6 ml. Todėl iš pateikto graduoto cilindro paveikslėlio galima perskaityti 3 reikšmingus skaičius. [9] Kitas pavyzdys, jei nuskaitoma ir apskaičiuota vertė yra 40,0 ml. Tiksli vertė būtų 40,0 ± 0,1 40,1 arba 39,9 ml. [10]

    Du graduoti cilindrai. Tradicinis graduotas cilindras (A paveikslėlyje) ir maišymo cilindrai (B paveikslėlyje)


    Agaro plokštelių pasėjimas ir sandarinimas

    Pateikė Science ASSIST komanda trečiadienį, 2015-06-03 22:14

    Saugos klausimai yra labai svarbūs mikrobiologijoje, nes gali kilti infekcinių pavojų. Tai griežtas teisingų procedūrų laikymasis, leidžiantis studentams ir darbuotojams saugiai dirbti su mikroorganizmais. Dirbant su mikroorganizmais, geriausia juos visus laikyti potencialiais patogenais (1) .

    Šiuo metu Australijoje kai kurios mikrobiologinės veiklos yra leidžiamos kai kuriose jurisdikcijose, o kitose ne. Todėl prieš tęsdami turėtumėte patikrinti jūsų jurisdikcijoje leidžiamą veiklą. „Science ASSIST“ šiuo metu konsultuojasi su valdžios institucijomis, kad pateiktų nacionaliniu mastu nuoseklias protingas ir veiksmingas rekomendacijas dėl geriausios praktikos mokyklų mikrobiologijos srityje.

    Svarbu žinoti galimus pavojus ir riziką prieš darbas su mikroorganizmais. Todėl Science ASSIST rekomenduoja atlikti rizikos įvertinimą ir imtis atitinkamų kontrolės priemonių. „Science ASSIST“ sukūrė vieno puslapio rizikos vertinimo šabloną, kuris padės tai padaryti (žr. Rizikos vertinimo šabloną).

    Mokyklose dažniausiai naudojami skiepijimo būdai:

    Šioje nuorodoje pateikiama gera bendroji informacija apie praktinę mikrobiologiją, įskaitant išsamias šių inokuliavimo metodų procedūras.

    Mikroorganizmai gali būti pasėti ant agaro lėkštelių mokyklų mokslo laboratorijose įvairiais metodais.

    1) Lėkštelių inokuliacija veikiant orui (nusėdusios lėkštelės):

    Petri lėkštelės tam tikrą laiką paliekamos atviros orui įvairiose laboratorijos vietose, prieš uždedamos dangtelius, užklijuojamos 4 lipnios juostos gabalėliais ir inkubuojamos. Lėkštės neturėtų būti atidarytos tokiose vietose kaip tualetai.

    2) Inokuliacija tiesioginio kontakto būdu.

    Mikroorganizmai perkeliami tiesiai į agaro plokštelę, palietus agaro paviršių daiktu, pavyzdžiui, moneta. Nerekomenduojama liesti agaro piršto galiuku, nes tai gali paskatinti patogenų augimą.

    3) Lėkštelių inokuliavimas steriliais tamponais iš aplinkos mėginių:

    Sterilus tamponas sudrėkinamas steriliame sultinyje arba vandenyje ir nušluostomas plotas, iš kurio reikia paimti mėginį. Tada tamponas perkeliamas ant agaro plokštelės paviršiaus zigzago būdu (2), kad būtų perkelti visi mikroorganizmai. Tamponą galima išmesti į šiukšlių dėžę, nes jis nebuvo naudojamas vietoms, kuriose yra patogenų, valyti. Papildomai atsargumo sumetimais tamponą galima 2 valandoms įdėti į šviežiai paruoštą dezinfekavimo tirpalą, pvz., 0,25 % natrio hipochlorito tirpalą, prieš išmetant į šiukšles.

    4) Lėkštelių užsėjimas bakteriologinėmis kilpomis iš maisto mėginių, pavyzdžiui, jogurto ar sūrio:

    Termiškai sterilizuota kilpa gali būti naudojama mėginiams iš jogurto ar sūrio paimti. Kilpa naudojama mėginiui užtepti zigzago būdu ant agaro paviršiaus, kaip aprašyta aukščiau, arba uždedama ant agaro plokštelės paviršiaus dalies ir išbraukiama atskiroms kolonijoms, kaip aprašyta toliau.

    Pastaba: Minėtos kultūros laikomos „laukinėmis kultūromis“ ir turėtų būti tokios neatidaryti arba subkultūrintas. Prieš išmetant agaro plokšteles reikia sterilizuoti. Pasibaigus stebėjimams, plokštelės turi būti nukenksmintos sterilizuojant autoklave arba greitpuodyje prieš išmetant į atliekų konteinerį. Agaro lėkštelės turi būti dedamos į autoklavuojamą maišelį, pvz., orkaitės maišelį, kad būtų galima sterilizuoti 110 kPa/15psi, 121 °C temperatūroje 15–20 minučių autoklave arba greitpuodyje prieš išmetant.

    Nepamirškite pažymėti lėkštelės pagrindo aplink kraštą (3), o ne vidurį, kur bet koks augimas gali būti užmaskuotas, ir inkubuokite lėkštę apverstą, kad ant dangtelio susidaręs kondensatas nepatektų ant agaro, kuris paveiktų kolonijas. auga paviršiuje.

    Agaro plokštelių sandarinimas:

    Reikėtų vengti visiško Petri lėkštelių sandarumo inkubacijos metu, nes tai gali sukurti anaerobinę aplinką, kuri slopina aerobinių mikroorganizmų augimą ir skatina potencialių anaerobinių patogenų augimą (daugiau informacijos žr. toliau). „Science ASSIST“ rekomenduoja Petri lėkštelės dangtį ir pagrindą užklijuoti 4 lipnios juostelės gabalėliais (2, 3), kad būtų užtikrintos aerobinės sąlygos ir būtų išvengta atsitiktinio lėkštės atsidarymo inkubacijos metu. Prieš leidžiant mokiniams jas apžiūrėti, lėkštes galima užklijuoti lipnia juostele arba, pageidautina, „Parafilm“ perimetru. Taip išvengsite drėgmės ar lašelių, kurie gali prasiskverbti iš Petri lėkštelės, kurie gali būti infekcijos šaltiniai, taip pat neleis dangtelis tvirtai pritvirtinti prie pagrindo. Visi stebėjimai turi būti užklijuoti Petri lėkštelę. Parafilm yra unikalių savybių laboratorinė sandarinimo plėvelė. Tai elastinga, vaškinė plėvelė, kuri labai gerai lipdo aplink mėgintuvėlių viršūnes, butelius, kolbas ir aplink Petri lėkštes, kad būtų sandarus. Tai daug efektyviau nei lipni juosta.

    Esminė foninė informacija:

    Mokyklų mokslo laboratorijos priskiriamos (PC1) 1 fizinio izoliavimo lygiui, jei atitinka AS/NSZ 2243.3-2010 reikalavimus. Saugumas laboratorijose. 3 dalis. Mikrobiologijos sauga ir izoliavimas. PC1 laboratorijos tinkamos darbui su 1 rizikos grupės mikroorganizmais tik. Tai yra infekciniai mikroorganizmai, kurie yra "mažai tikėtina, kad sukeltų žmonių, augalų ar gyvūnų ligas“ ir „kur laboratorijos darbuotojai gali būti tinkamai apsaugoti standartine laboratorijos praktika” (4) .

    Anaerobiniai mikroorganizmai:

    Mokyklų laboratorijose reikėtų vengti daugintis anaerobiniams mikroorganizmams, kurių negalima auginti esant deguoniui. Anaerobai yra plačiai paplitę gamtoje ir gali būti patogeniški (gali sukelti ligas), kai jie pašalinami iš įprastos aplinkos (5) . Dauguma anaerobų patenka į 2 ar 3 rizikos grupės mikroorganizmus, kurie nėra tvarkomi PC1 laboratorijose ir yra susiję su daugeliu ligų, pavyzdžiui, dantų infekcijomis, abscesais, pneumonija ir apendicitu. Svarbu, kad procedūros ir metodai, naudojami dirbant su mikrobais mokyklos laboratorijoje, nesudarytų anaerobinių sąlygų, kurios gali paskatinti patogeninių anaerobinių organizmų augimą.

    Procedūros, skirtos užkirsti kelią patogenų augimui:

    Be to, kad inkubacijos metu agaro plokštelės neužsandarinamos, mokyklos laboratorijose turėtų būti atliekamos ir kitos procedūros, kad būtų išvengta patogeninių organizmų augimo.

    • Dirbant su mikroorganizmais, svarbu visada laikytis aseptikos taisyklių. Didelė rizika, susijusi su mikrobiologija, yra mikrobinių aerozolių susidarymas, kai į orą patenka smulkūs vandens lašeliai, kuriuose yra ląstelių ir (arba) sporų.
    • Aseptinė technika yra pagrindinis mikrobiologijos įgūdis:
      • išvengti auginimo terpės užteršimo nepageidaujamais mikrobais,
      • užkirsti kelią personalo ir darbo paviršių užteršimui ir
      • kad netyčia į aplinką nepatektų mikrobai.
      • Maistinis agaras yra paprasta terpė, kuri palaiko įvairių bakterijų ir pelėsių augimą ir tinkama naudoti mokyklų laboratorijose.
      • Terpė, skirta atrinkti išrankesnius mikroorganizmus ir patogenus, tokius kaip kraujas ir MacConkey agaras neturėtų būti naudojamas.

      Atsargumo priemonės sėjant agaro plokšteles.

      • Prieš ir po darbo su mikroorganizmais nusiplaukite rankas su muilu ir vandeniu.
      • Visus įpjovimus uždenkite vandeniui atspariu tvarsčiu ir apsvarstykite galimybę mūvėti vienkartines pirštines.
      • Prieš ir po darbo su mikroorganizmais įsitikinkite, kad darbo paviršiai yra nukenksminti 70% etanoliu.
      • Įsitikinkite, kad inokuliavimo instrumentai (kilpelės, tamponai, pipetės ir barstytuvai) yra sterilizuoti prieš ir po naudojimo.
      • Užtikrinkite, kad inokuliavimo instrumentai, kuriuose yra mikrobiologinių mėginių, nesiliestų su jokiu paviršiumi, išskyrus agarą, į kurį reikia sėti.
      • Uždegkite visų mėgintuvėlių ir butelių angas, kai nuimamas dangtelis, ir prieš jį uždedant.
      • Lėkštės turi būti atidarytos minimalų laiką, kad būtų sumažinta rizika, kad iš oro patektų bet kokie teršalai.
      • Inokuliacija turi būti atlikta kuo greičiau, kad būtų kuo mažiau teršalų.
      • Dirbkite arti Bunseno liepsnos, nes ji užtikrina trauką, kuri išneša orą iš darbo vietos ir taip sumažina oro taršą.
      • Turėkite bakterijų išsiliejimo rinkinį (šviežiai paruošto 1% natrio hipochlorito, kibirą, šluostę, plastikinius atliekų išmetimo maišelius, popierinį rankšluostį, vienkartines pirštines, apsauginius akinius, kaukę, plastikinę vienkartinę prijuostę).

      Subkultūra:

      Science ASSIST šiuo metu ieško patarimo dėl šios veiklos mokyklose. Šiuo metu kai kuriose jurisdikcijose jie leidžiami, o kitose – ne. Šią veiklą vykdančius mokinius prižiūrintys mokytojai turi turėti mikrobiologinį išsilavinimą.

      1. Juostos plokštelės metodas:

      Šio metodo principas yra laipsniškas bakterijų inokuliato praskiedimas ant agaro plokštelės paviršiaus, kad susidarytų pavienės izoliuotos grynos kolonijos. Nedidelis mėginio kiekis dedamas ant agaro lėkštelės paviršiaus su steriliu tamponu arba liepsna sėjimo kilpa. Tai vadinama pradiniu inokuliu. Kilpa sterilizuojama ir naudojama pradiniam inokuliatui paskleisti viena kryptimi, kad susidarytų keli dryžiai. Tai vadinama pirmuoju dryžių rinkiniu. Kilpa vėl sterilizuojama liepsna, o dryžių kūrimo procesas kartojamas dar 2–3 kartus, kiekvieną kartą grįžtant į ankstesnį dryžių rinkinį. Po inkubacijos galutiniame dryžių rinkinyje turėtų būti matomos atskiros kolonijos. Kiekviena kolonija susidaro iš vienos bakterijos ląstelės, kai ji dauginasi.

      2. Plokštelių inokuliavimas pipetėmis ir stiklo barstytuvais vejos plokštelėms gaminti:

      Steriliomis vata užkimštomis graduotomis arba Pasteur pipetėmis galima lašinti 2–3 lašus bakterijų iš maistinių sultinio kultūrų ant agaro lėkštelės paviršiaus. Tada naudojamas sterilus stiklinis barstytuvas, kuris tolygiai paskirsto lašus ant agaro paviršiaus. Ši technika naudojama ruošiant veją ar paskleisti kultūrą, kai visas lėkštės paviršius tolygiai padengtas bakterijomis. Jis dažniausiai naudojamas tiriant antimikrobines medžiagas, pvz., antibiotikus ir dezinfekavimo priemones, arba skaičiuojant kolonijas. Pipetė ir barstytuvas turi būti nukenksminamas autoklave arba įdedamas į dezinfekavimo tirpalą iš karto po naudojimo ir prieš valymą.

      Mikroorganizmai, kuriems augti nereikia deguonies. Deguonis nenaudojamas energijai gauti ir yra toksiškas šiems mikroorganizmams. Jie dažnai vadinami griežtais arba privalomais anaerobais.

      Fakultatyvūs anaerobiniai mikroorganizmai:

      Mikroorganizmai, augantys be deguonies arba jo esant. Jie gali metabolizuoti energiją aerobiniu arba anaerobiniu būdu. Deguonis nėra toksiškas šiems mikroorganizmams.

      Mikroorganizmas, galintis sukelti ligas.

      Aseptinis mikroorganizmo perkėlimas iš vienos agaro lėkštelės į kitą šviežio agaro lėkštelę, kad jis nuolat augtų.

      (2) „Geriausios mikrobiologijos praktikos Australijos mokyklose gairės“. Science ASSIST svetainė, https://assist.asta.edu.au/resource/4196/guidelines-best-practice-microb. (Pridėta 2019 m. spalio mėn.)

      (3) JK bendrosios mikrobiologijos draugija. 2006 m. Pagrindinė praktinė mikrobiologija, vadovas . „Microbiology Online“ svetainė: http://www.microbiologyonline.org.uk/file/ca2189fba3b39d24c5a44c1285d008.

      (4) Australijos standartai. 2010. AS/NZS 2243 Sauga laboratorijose, 3 dalis: 2010 Mikrobiologinė sauga ir izoliavimas. Sidnėjus, Australija.

      (5) Hentges, David J. „Anaerobai: bendrosios charakteristikos“ Baron S, (redaktorius) 1996 m. Medicinos mikrobiologija. 4-asis leidimas. Teksaso universiteto medicinos skyrius: Galvestonas (TX). Nacionalinio biotechnologijų informacijos centro svetainė https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK7638/

      NSW Švietimo ir bendruomenių departamento „Cheminės saugos mokyklose (CSIS)“ išteklių paketas. NSW DEC svetainė https://education.nsw.gov.au/ DEC intranetas, reikalingas prisijungimas.

      (4) Šis išrašas iš AS/NZS 2243 Sauga laboratorijose, 3 dalis: 2010 Mikrobiologinė sauga ir izoliavimas buvo atkurtas su SAI Global Ltd leidimu pagal licenciją 1407-c117

      Dėkojame, kad pateikėte atsakymą į šį klausimą. Jūsų atsakymas buvo nusiųstas mūsų administracijos komandai moderuoti.


      EKSPERIMENTAI BAKTERIJŲ AUGIMUI RODYTI – pagrindinės technikos

      Bakterijos augs praktiškai ant bet kurio ekologiško maisto šaltinio anglies junginiai, kurių reikia kvėpuoti energijos, ir azoto junginiai, į kuriuos reikia įtraukti baltymai dėl augimas. Šios medžiagos paprastai tiekiamos ištirpintos vandenyje. Tačiau gamtoje bakterijos gali išskirdamos kietas ir netirpias medžiagas fermentai į substratą, kuriame jie auga. Taip šios medžiagos suskaidomos arba suvirškinamos iki paprastesnių medžiagų ir procesas vadinamas ekstraląstelinis virškinimas nes vyksta už bakterijų ląstelių ribų.

      Abu normalūs žiniasklaida bakteriologijoje naudojamas skaidrus į sriubą panašus skystis maistinių medžiagų sultinys, dažniausiai vamzdeliuose ir maistinių medžiagų agaras, kuris sustingsta į želė pridedant jūros dumblių ekstrakto, vadinamo agaru, o ištirpęs pilamas į stiklą ar plastiką Petri lėkštelės - taip pat žinomos kaip "lėkštės".

      Standartas anglies šaltinis yra gliukozė, ir azoto dažnai teikia peptonai (iš dalies suvirškintas baltymai), arba neorganinės druskos. Taip pat gali būti tiekiami mineralai ir vitaminai, atsižvelgiant į bakterijų augimo poreikius. Kad pH būtų stabilus, gali būti naudojami cheminių medžiagų deriniai (buferiai). Išmatuoti koncentratų kiekiai pilami į vandenį ir ištirpinami, kad būtų atkurta terpė.

      Kartais medžiagos įmaišomos į terpę, kad būtų slopinamas kitų tipų bakterijų augimas. Tokių selektyvių medijų yra daug.

      Mikrobiologiniai metodai

      Sterilizacija, aseptikos metodai, inokuliacija, inkubacija

      Tada šios žiniasklaidos priemonės turi būti sterilizuotas kaitinant autoklave (kaip greitpuodyje) 121 °C temperatūroje (slėgis 1 baras arba 15 svarų/kv. colio) 15 minučių, o tai žudo visus gyvus organizmus, įskaitant sporas.

      Visi nuo šio momento naudojami aparatai turi būti sterilizuojami karščiu (stikliniai indai – 160 C 2 val.) arba veikiant radiacijai.

      Aseptikos metodai turi būti naudojami siekiant sumažinti bakterinio užteršimo tikimybę. Tai paprastai apima dezinfekcija darbo zonoje, sumažinant galimą bakterijų patekimą iš oro į atvirą terpę ir naudojimą liepsnos sunaikinti bakterijas, kurios gali patekti į kraujagysles jas atidarius.

      Bakterijos gali patekti į terpę (paskiepytas) įvairiomis priemonėmis. Dažniausiai bakterijos pvz. iš lašelio termiškai sterilizuotoje kilpoje paskleisti ant (paruošto) agaro paviršiaus. Panaši technika naudojama su sultinio kultūromis. Kartais skystyje esančios bakterijos sterilia pipete įvedamos į Petri lėkštelę prieš užpilant (gana vėsią) agaro terpę ant viršaus ("pilimo lėkštelės").

      Tada yra Petri lėkštelės su agaru arba vamzdeliai su sultiniu inkubuojamas, t.y. įdėti į specialų aparatą esant fiksuotai temperatūrai (dažniausiai 37°C – žmogaus kūno temperatūra, galimiems patogenams – arba 25°C bakterijoms iš aplinkos). Mokyklose naudojama žemesnė inkubavimo temperatūra, siekiant atgrasyti nuo galimų patogenų dauginimosi.

      Auginant bakterijas, Petri lėkštes įprasta apversti, kad kondensato lašeliai nepatektų ant agaro paviršiaus. Šiame etape Petri lėkštelės dažnai „užsandarinamos“, kad jas tvarkantys žmonės neužterštų bakterijomis, kurios labai dauginsis. Įprasta naudoti 2 lipnios juostos juosteles nuo pagrindo iki dangtelio, o ne bandyti užklijuoti apskritą Petri lėkštelės kraštą. Taip siekiama apsisaugoti nuo anaerobinių organizmų augimo dėl oro trūkumo. Tačiau reikia turėti omenyje, kad bet kokie lašeliai iš iš dalies sandariai uždarytos Petri lėkštelės gali būti infekcijos šaltiniai.

      Rezultatai

      Skystos terpės kaip sultinys tampa Debesuota jei yra bakterijų. Tai gali būti dėl to, kad tik viena bakterinė ląstelė iš pradžių patenka į terpę, o vėliau pakartotinai dalijasi, kad gautų milijonus!


      Bakterijos ant agaro „lėkštelių“ tampa matomos kaip atskiros apskritimo formos kolonijų kiekviena kolonija turėtų būti atskira bakterinė ląstelė (arba grupė), kuri pasidalijo pakartotinai, bet laikomos vienoje vietoje, susidariusios ląstelės susikaupė ir sudaro matomą lopą.


      Išplėtus šį metodą naudojant serijiniai skiedimai in sterilised liquids, the number of bacteria in a given amount of sample, e.g. food, can be calculated.


      After use, bacterial cultures, etc. must be sterilised by the use of heat, before disposal.


      REAGENTS AND SOLUTIONS

      Lugol's iodine 1% (w/v)

      • Weigh 0.1 g iodine (I2) and 0.2 g potassium iodide (KI).
      • Dissolve the solids in 30 ml dH2O.
      • Store up to 1 year at room temperature

      YP maltose

      • Weigh 10 g yeast extract and 20 g bactopeptone into a 1-L bottle
      • Add 900 ml of dH2O
      • Sterilize by autoclaving for 20 min at 121°C
      • After autoclaving, add 100 ml of a 20% (w/v) maltose stock solution
      • Store up to several weeks at room temperature
      • Weigh 10 g yeast extract and 20 g bactopeptone in a 1-L bottle
      • Add 900 ml of dH2O
      • Sterilize by autoclaving for 20 min at 121°C
      • After autoclaving, add 100 ml of a 20% (w/v) d -glucose stock solution
      • Store up to several weeks at room temperature

      Zinc chloride solution

      • Prepare a stock solution of zinc chloride at 200 ppm (417 mg/L ZnCl2).
      • Sterilize by autoclaving for 20 min at 121°C
      • Store up to several at room temperature

      Turinys

      Aseptic technique is a key component of all invasive medical procedures. Similar control measures are also recommended in any healthcare setting to prevent the spread of infection generally. [ reikalinga citata ]

      Hand hygiene Edit

      Hand hygiene is one of the basic, yet most important steps in IPC (Infection Prevention and Control). Hand hygiene reduces the chances of HAI (Healthcare Associated Infections) drastically at a floor-low cost. Hand hygiene consists of either hand wash(water based) or hand rubs(alcohol based). Hand wash is a solid 7-steps according to the WHO standards, wherein hand rubs are 5-steps. [ reikalinga citata ]

      Independent studies by Ignaz Semmelweis in 1846 in Vienna and Oliver Wendell Holmes, Sr. in 1843 in Boston established a link between the hands of health care workers and the spread of hospital-acquired disease. [3] The U.S. Centers for Disease Control and Prevention (CDC) state that "It is well documented that the most important measure for preventing the spread of pathogens is effective handwashing". [4] In the developed world, hand washing is mandatory in most health care settings and required by many different regulators. [ reikalinga citata ]

      In the United States, OSHA standards [5] require that employers must provide readily accessible hand washing facilities, and must ensure that employees wash hands and any other skin with soap and water or flush mucous membranes with water as soon as feasible after contact with blood or other potentially infectious materials (OPIM). [ reikalinga citata ]

      In the UK healthcare professionals have adopted the 'Ayliffe Technique', based on the 6 step method developed by Graham Ayliffe, JR Babb and AH Quoraishi. [6]

      Mean percentage changes in bacterial numbers
      Method used Change in
      bacteria present
      Paper towels (2-ply 100% recycled). - 48.4%
      Paper towels (2-ply through-air dried, 50% recycled) - 76.8%
      Warm air dryer + 254.5%
      Jet air dryer + 14.9%

      Drying is an essential part of the hand hygiene process. In November 2008, a non-peer-reviewed [7] study was presented to the European Tissue Symposium by the University of Westminster, London, comparing the bacteria levels present after the use of paper towels, warm air hand dryers, and modern jet-air hand dryers. [8] Of those three methods, only paper towels reduced the total number of bacteria on hands, with "through-air dried" towels the most effective. [ reikalinga citata ]

      The presenters also carried out tests to establish whether there was the potential for cross-contamination of other washroom users and the washroom environment as a result of each type of drying method. They found that:

      • the jet air dryer, which blows air out of the unit at claimed speeds of 400 mph, was capable of blowing micro-organisms from the hands and the unit and potentially contaminating other washroom users and the washroom environment up to 2 metres away
      • use of a warm air hand dryer spread micro-organisms up to 0.25 metres from the dryer
      • paper towels showed no significant spread of micro-organisms.

      In 2005, in a study conducted by TUV Produkt und Umwelt, different hand drying methods were evaluated. [9] The following changes in the bacterial count after drying the hands were observed:

      Drying method Effect on bacterial count
      Paper towels and roll Decrease of 24%
      Hot-air drier Increase of 117%

      Cleaning, Disinfection, Sterilization Edit

      The field of infection prevention describes a hierarchy of removal of microorganisms from surfaces including medical equipment and instruments. Cleaning is the lowest level, accomplishing substantial removal. Disinfection involves the removal of all pathogens other than bacterial spores. Sterilization is defined as the removal or destruction of ALL microorganisms including bacterial spores. [ reikalinga citata ]

      Cleaning Edit

      Cleaning is the first and simplest step in preventing the spread of infection via surfaces and fomites. Cleaning reduces microbial burden by chemical deadsorption of organisms (loosening bioburden/organisms from surfaces via cleaning chemicals), simple mechanical removal (rinsing, wiping), as well as disinfection (killing of organisms by cleaning chemicals). [ reikalinga citata ]

      In order to reduce their chances to contract an infection, individuals are recommended to maintain a good hygiene by washing their hands after every contact with questionable areas or bodily fluids and by disposing of garbage at regular intervals to prevent germs from growing. [10]

      Disinfection Edit

      Disinfection uses liquid chemicals on surfaces and at room temperature to kill disease causing microorganisms. Ultraviolet light has also been used to disinfect the rooms of patients infected with Clostridium difficile after discharge. [11] Disinfection is less effective than sterilization because it does not kill bacterial endospores. [12]

      Sterilization Edit

      Sterilization is a process intended to kill all microorganisms and is the highest level of microbial kill that is possible. [ reikalinga citata ]

      Sterilization, if performed properly, is an effective way of preventing Infections from spreading. It should be used for the cleaning of medical instruments and any type of medical item that comes into contact with the blood stream and sterile tissues. [ reikalinga citata ]

      There are four main ways in which such items are usually sterilized: autoclave (by using high-pressure steam), dry heat (in an oven), by using chemical sterilants such as glutaraldehydes or formaldehyde solutions or by exposure to ionizing radiation. The first two are the most widely used methods of sterilization mainly because of their accessibility and availability. Steam sterilization is one of the most effective types of sterilizations, if done correctly which is often hard to achieve. Instruments that are used in health care facilities are usually sterilized with this method. The general rule in this case is that in order to perform an effective sterilization, the steam must get into contact with all the surfaces that are meant to be disinfected. On the other hand, dry heat sterilization, which is performed with the help of an oven, is also an accessible type of sterilization, although it can only be used to disinfect instruments that are made of metal or glass. The very high temperatures needed to perform sterilization in this way are able to melt the instruments that are not made of glass or metal.

      Effectiveness of the sterilizer, for example a steam autoclave is determined in three ways. [12] First, mechanical indicators and gauges on the machine itself indicate proper operation of the machine. Second heat sensitive indicators or tape on the sterilizing bags change color which indicate proper levels of heat or steam. And, third (most importantly) is biological testing in which a microorganism that is highly heat and chemical resistant (often the bacterial endospore) is selected as the standard challenge. If the process kills this microorganism, the sterilizer is considered to be effective. [12]

      Steam sterilization is done at a temperature of 121 C (250 F) with a pressure of 209 kPa (

      2atm). In these conditions, rubber items must be sterilized for 20 minutes, and wrapped items 134 C with pressure of 310 kPa for 7 minutes. The time is counted once the temperature that is needed has been reached. Steam sterilization requires four conditions in order to be efficient: adequate contact, sufficiently high temperature, correct time and sufficient moisture. [13] Sterilization using steam can also be done at a temperature of 132 C (270 F), at a double pressure.

      Dry heat sterilization is performed at 170 C (340 F) for one hour or two hours at a temperature of 160 C (320 F). Dry heat sterilization can also be performed at 121 C, for at least 16 hours. [14]

      Chemical sterilization, also referred to as cold sterilization, can be used to sterilize instruments that cannot normally be disinfected through the other two processes described above. The items sterilized with cold sterilization are usually those that can be damaged by regular sterilization. A variety of chemicals can be used including aldehydes, hydrogen peroxide, and peroxyacetic acid. Commonly, glutaraldehydes and formaldehyde are used in this process, but in different ways. When using the first type of disinfectant, the instruments are soaked in a 2–4% solution for at least 10 hours while a solution of 8% formaldehyde will sterilize the items in 24 hours or more. Chemical sterilization is generally more expensive than steam sterilization and therefore it is used for instruments that cannot be disinfected otherwise. After the instruments have been soaked in the chemical solutions, they must be rinsed with sterile water which will remove the residues from the disinfectants. This is the reason why needles and syringes are not sterilized in this way, as the residues left by the chemical solution that has been used to disinfect them cannot be washed off with water and they may interfere with the administered treatment. Although formaldehyde is less expensive than glutaraldehydes, it is also more irritating to the eyes, skin and respiratory tract and is classified as a potential carcinogen, [13] so it is used much less commonly.

      Ionizing radiation is typically used only for sterilizing items for which none of the above methods are practical, because of the risks involved in the process

      Personal protective equipment Edit

      Personal protective equipment (PPE) is specialized clothing or equipment worn by a worker for protection against a hazard. The hazard in a health care setting is exposure to blood, saliva, or other bodily fluids or aerosols that may carry infectious materials such as Hepatitis C, HIV, or other blood borne or bodily fluid pathogen. PPE prevents contact with a potentially infectious material by creating a physical barrier between the potential infectious material and the healthcare worker. [15]

      The United States Occupational Safety and Health Administration (OSHA) requires the use of personal protective equipment (PPE) by workers to guard against blood borne pathogens if there is a reasonably anticipated exposure to blood or other potentially infectious materials. [16]

      Components of PPE include gloves, gowns, bonnets, shoe covers, face shields, CPR masks, goggles, surgical masks, and respirators. How many components are used and how the components are used is often determined by regulations or the infection control protocol of the facility in question, which in turn are derived from knowledge of the mechanism of transmission of the pathogen(s) of concern. Many or most of these items are disposable to avoid carrying infectious materials from one patient to another patient and to avoid difficult or costly disinfection. In the US, OSHA requires the immediate removal and disinfection or disposal of a worker's PPE prior to leaving the work area where exposure to infectious material took place. [17] For health care professionals who may come into contact with highly infectious bodily fluids, using personal protective coverings on exposed body parts improves protection. [18] Breathable personal protective equipment improves user-satisfaction and may offer a similar level of protection. [18] In addition, adding tabs and other modifications to the protective equipment may reduce the risk of contamination during donning and doffing (putting on and taking off the equipment). [18] Implementing an evidence-based donning and doffing protocol such as a one-step glove and gown removal technique, giving oral instructions while donning and doffing, double gloving, and the use of glove disinfection may also improve protection for health care professionals. [18]

      The inappropriate use of PPE equipment such as gloves, has been linked to an increase in rates of the transmission of infection, [19] and the use of such must be compatible with the other particular hand hygiene agents used. [20] Research studies in the form of randomized controlled trials and simulation studies are needed to determine the most effective types of PPE for preventing the transmission of infectious diseases to healthcare workers. There is low quality evidence that supports making improvements or modifications to personal protective equipment in order to help decrease contamination. [18] Examples of modifications include adding tabs to masks or gloves to ease removal and designing protective gowns so that gloves are removed at the same time. In addition, there is weak evidence that the following PPE approaches or techniques may lead to reduced contamination and improved compliance with PPE protocols: Wearing double gloves, following specific doffing (removal) procedures such as those from the CDC, and providing people with spoken instructions while removing PPE. [18]

      Antimicrobial surfaces Edit

      Microorganisms are known to survive on non-antimicrobial inanimate 'touch' surfaces (e.g., bedrails, over-the-bed trays, call buttons, bathroom hardware, etc.) for extended periods of time. [21] [22] This can be especially troublesome in hospital environments where patients with immunodeficiencies are at enhanced risk for contracting nosocomial infections.

      Products made with antimicrobial copper alloy (brasses, bronzes, cupronickel, copper-nickel-zinc, and others) surfaces destroy a wide range of microorganisms in a short period of time. [23] The United States Environmental Protection Agency has approved the registration of 355 different antimicrobial copper alloys and one synthetic copper-infused hard surface that kill E. coli O157:H7, methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA), Stafilokokas, Enterobacter aerogenes, ir Pseudomonas aeruginosa in less than 2 hours of contact. Other investigations have demonstrated the efficacy of antimicrobial copper alloys to destroy Clostridium difficile, influenza A virus, adenovirus, and fungi. [23] As a public hygienic measure in addition to regular cleaning, antimicrobial copper alloys are being installed in healthcare facilities in the UK, Ireland, Japan, Korea, France, Denmark, and Brazil. The synthetic hard surface is being installed in the United States as well as in Israel. [24]

      Health care workers may be exposed to certain infections in the course of their work. Vaccines are available to provide some protection to workers in a healthcare setting. Depending on regulation, recommendation, the specific work function, or personal preference, healthcare workers or first responders may receive vaccinations for hepatitis B influenza measles, mumps and rubella Tetanus, diphtheria, pertussis N. meningitidis and varicella. [25]

      Surveillance is the act of infection investigation using the CDC definitions. Determining the presence of a hospital acquired infection requires an infection control practitioner (ICP) to review a patient's chart and see if the patient had the signs and symptom of an infection. Surveillance definitions exist for infections of the bloodstream, urinary tract, pneumonia, surgical sites and gastroenteritis.

      Surveillance traditionally involved significant manual data assessment and entry in order to assess preventative actions such as isolation of patients with an infectious disease. Increasingly, computerized software solutions are becoming available that assess incoming risk messages from microbiology and other online sources. By reducing the need for data entry, software can reduce the data workload of ICPs, freeing them to concentrate on clinical surveillance.

      As of 1998, approximately one third of healthcare acquired infections were preventable. [26] Surveillance and preventative activities are increasingly a priority for hospital staff. The Study on the Efficacy of Nosocomial Infection Control (SENIC) project by the U.S. CDC found in the 1970s that hospitals reduced their nosocomial infection rates by approximately 32 per cent by focusing on surveillance activities and prevention efforts. [27]

      In healthcare facilities, medical isolation refers to various physical measures taken to interrupt nosocomial spread of contagious diseases. Various forms of isolation exist, and are applied depending on the type of infection and agent involved, and its route of transmission, to address the likelihood of spread via airborne particles or droplets, by direct skin contact, or via contact with body fluids.

      In cases where infection is merely suspected, individuals may be quarantined until the incubation period has passed and the disease manifests itself or the person remains healthy. Groups may undergo quarantine, or in the case of communities, a cordon sanitaire may be imposed to prevent infection from spreading beyond the community, or in the case of protective sequestration, into a community. Public health authorities may implement other forms of social distancing, such as school closings, when needing to control an epidemic. [28]

      Barriers to the ability of healthcare workers to follow PPE and infection control guidelines include communication of the guidelines, workplace support (manager support), the culture of use at the workplace, adequate training, the amount of physical space in the facility, access to PPE, and healthcare worker motivation to provide good patient care. [29]

      Facilitators include the importance of including all the staff in a facility (healthcare workers and support staff) should be done when guidelines are implemented. [29]

      When an unusual cluster of illness is noted, infection control teams undertake an investigation to determine whether there is a true disease outbreak, a pseudo-outbreak (a result of contamination within the diagnostic testing process), or just random fluctuation in the frequency of illness. If a true outbreak is discovered, infection control practitioners try to determine what permitted the outbreak to occur, and to rearrange the conditions to prevent ongoing propagation of the infection. Often, breaches in good practice are responsible, although sometimes other factors (such as construction) may be the source of the problem. [ reikalinga citata ]

      Outbreaks investigations have more than a single purpose. These investigations are carried out in order to prevent additional cases in the current outbreak, prevent future outbreaks, learn about a new disease or learn something new about an old disease. Reassuring the public, minimizing the economic and social disruption as well as teaching epidemiology are some other obvious objectives of outbreak investigations. [30]

      According to the WHO, outbreak investigations are meant to detect what is causing the outbreak, how the pathogenic agent is transmitted, where it all started from, what is the carrier, what is the population at risk of getting infected and what are the risk factors. [ reikalinga citata ]

      Practitioners can come from several different educational streams. Many begin as nurses, some as medical technologists (particularly in clinical microbiology), and some as physicians (typically infectious disease specialists). Specialized training in infection control and health care epidemiology are offered by the professional organizations described below. Physicians who desire to become infection control practitioners often are trained in the context of an infectious disease fellowship. Training that is conducted "face to face", via a computer, or via video conferencing may help improve compliance and reduce errors when compared with "folder based" training (providing health care professionals with written information or instructions). [18]

      In the United States, Certification Board of Infection Control and Epidemiology is a private company that certifies infection control practitioners based on their educational background and professional experience, in conjunction with testing their knowledge base with standardized exams. The credential awarded is CIC, Certification in Infection Control and Epidemiology. It is recommended that one has 2 years of Infection Control experience before applying for the exam. Certification must be renewed every five years. [31]

      A course in hospital epidemiology (infection control in the hospital setting) is offered jointly each year by the Centers for Disease Control and Prevention (CDC) and the Society for Healthcare Epidemiology of America. [32]

      Australija Redaguoti

      In 2002, the Royal Australian College of General Practitioners published a revised standard for office-based infection control which covers the sections of managing immunisation, sterilisation and disease surveillance. [33] [34] However, the document on the personal hygiene of health workers is only limited to hand hygiene, waste and linen management, which may not be sufficient since some of the pathogens are air-born and could be spread through air flow. [35] [36]

      Since 1 November 2019, the Australian Commission on Safety and Quality in Health Care has managed the Hand Hygiene initiative in Australia, an initiative focused on improving hand hygiene practices to reduce the incidence of healthcare associated infections. [37]

      Jungtinės Valstijos Redaguoti

      Currently, the federal regulation that describes infection control standards, as related to occupational exposure to potentially infectious blood and other materials, is found at 29 CFR Part 1910.1030 Bloodborne pathogens. [38]


      Žiūrėti video įrašą: 기초정리 #15-딱! 개념만 고압증기소독u0026EO가스소독 (Birželis 2022).